Informatie

Wat is de beste manier om immersieolie van de microscooplens te verwijderen?

Wat is de beste manier om immersieolie van de microscooplens te verwijderen?



We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Het is mijn taak om paddenstoelensporen op x100 te fotograferen met immersieolie.

Wat is de beste methode om de olie van de lens te reinigen?

Op dit moment veeg ik het gewoon af met een wattenstaafje.


In mijn ervaring heeft elke microscoop die het waard is om te gebruiken een minder. Ik zou sterk aanbevelen om die oppas te vinden, hun mening over schoonmaakpraktijken moet worden gerespecteerd. Objectieven kunnen erg prijzig zijn, dus je moet er voorzichtig mee omgaan.

Wasmiddel of water zijn niet geschikt voor een olie-immersielens. Het wasmiddel kan de antireflectiecoating op de lens waarschijnlijk beschadigen. Water vermengt zich niet met olie.

Mijn standaardprocedure met olie-objectieflenzen is om olie af te vegen met een lensdoekje van goede kwaliteit (Kodak). Gebruik geen gezichtsdoekjes of een laboratoriumdoekjes, zoals kimwipes. Ze zijn te schurend en kunnen de lens beschadigen. Als iemand olie op de lens heeft laten drogen, zorg ik ervoor dat ik weet welke oplosmiddelen geschikt zijn voor de lens en de olie die wordt gebruikt.


Zo min mogelijk reinigende nafta, farmaceutische kwaliteit (in het Duits: "wundbenzin") en hoogwaardig lensreinigingspapier. Vroeger gebruikten microscopisten wat speeksel op een stuk stof, maar dat was in het pre-coated optics-tijdperk.


Reinig immersieolie van een lens door eerst een nieuw stuk lenspapier langzaam over de lens te trekken, zoals een badhanddoek over de rug, om de olie te absorberen; verschuif indien nodig naar een nieuw deel van het vel en gebruik indien nodig meer dan één vel (hoewel dat suggereert dat ik te veel olie heb gebruikt). Veeg de lens vervolgens voorzichtig af met vers lenspapier met een beetje oplosmiddel erop; gebruik voor de meest voorkomende Cargille type A en B oliën een hoogwaardige naptha of xyleen (xylol). Werk af door af te vegen met droog papier.

Als er een residu aanhoudt, en dit zal ten minste een deel van de tijd duren, reinig dan de lens met lensweefsel nadat u zachtjes op de lens hebt ingeademd om het te beslaan: u wilt gecondenseerd vocht, geen speeksel. Het is dus een zachte, lange h-a-a-a-a. Veeg in concentrische cirkelbewegingen, naar binnen of naar buiten drijvend. Herhalen. Deze methode zorgt ervoor dat u de lens niet nat maakt en mogelijk beschadigt. Opgedroogde olie kan worden verzacht met een spoor nieuwe olie, of beter nog, een van deze oplosmiddelen. Dus ja, altijd verward, dat ben je nog steeds; je moet dat laatste spoor van xylol verwijderen. Gebruik geen wasmiddel. Of water. Ooit. Gebruik Xylol of naptha!

De reeks antwoorden hier toont de gevaren van online advies inwinnen. Kijk naar de online microscoop "universiteiten" opgezet door Zeiss en anderen, in het bijzonder, indien mogelijk door degene die JOUW microscoop heeft gemaakt. Daar vind je het juiste antwoord. Tegenwoordig weten zelfs "verzorgers" het misschien niet!


Een onvoldoende beeldkwaliteit kan verschillende oorzaken hebben. Als u verkeerde microscoopinstellingen zoals inhomogene verlichting of een verkeerde diafragma-instelling kunt uitsluiten, is de volgende stap het preparaat controleren. Als het monster in orde is, inspecteert u het objectglaasje en het dekglaasje en reinigt u indien nodig. Als u de reden voor het kwaliteitsverlies nog steeds niet kunt vinden en de juiste immersieolie gebruikt, kan het probleem te wijten zijn aan vuil in de microscoop zelf.

Sommige componenten zoals filterkubussen en de binnenoptiek van de microscoop mogen alleen worden gereinigd door specialisten van de fabrikant en niet door de gebruiker worden aangeraakt. Andere onderdelen die gevoelig zijn voor onzuiverheden kunnen door de gebruiker zorgvuldig worden gereinigd, zoals:

Afb. 1: Waar te reinigen: 1. Objectief frontlens 2. Camerasensor afdekglas 3. Dekglaasje en objectglaasje 4. C-vatting 5. Condensorlens 6. Diverse glasoppervlakken

Hoe maak je een microscooplens schoon

De lens van een microscoop is erg delicaat en dus moeilijk schoon te maken. Het is niet aan te raden de lens van de te reinigen microscoop te verwijderen. De microscooplens behoort tot een van de drie belangrijkste elementen waaruit de microscoop bestaat. De lens zorgt voor een toename van de objecten die moeten worden waargenomen door filters die "daaropvolgende anti-gel" worden genoemd. Omdat het belangrijk is om uw lens schoon te houden om de kwaliteit van het beeld dat de microscoop geeft te behouden, willen we bij OneHowTo u wat advies geven zodat u maak een microscooplens schoon. Volg deze stappen nauwkeurig:

De eerste stap naar maak een microscooplens schoon is om wat te nemen lensreinigingspapier die je kunt vinden in speciaalzaken of distributeurs van laboratoriumapparatuur. U kunt ook gecertificeerd katoen gebruiken.

Raak nooit de microscooplens met uw vingertoppen, aangezien vingerafdrukken de zichtbaarheid van de microscoop kunnen beïnvloeden. Wanneer vingerafdrukken op de lens zijn gedroogd, is het erg moeilijk om ze te verwijderen en dit moet worden gedaan met gedestilleerd water.

Als het los vuil is, is de gemakkelijkste manier om het te verwijderen door voorzichtig wat perslucht toe te passen, zodat het gewoon wegwaait.

Als het vuil niet met lucht loskomt, voeg dan een paar toe druppels ether op het katoen of lensreinigingspapier en reinig de lens voorzichtig.

Wrijf het lensreinigingspapier dat in ether is gedrenkt over de microscooplens terwijl u cirkelvormige bewegingen maakt.

Cederolie die op de voorste lens van het immersieobjectief is achtergebleven, moet onmiddellijk na het einde van de waarneming worden verwijderd.

Hiervoor kunt u "clean lens" papier gebruiken met een druppel xyleen.

Om de lens te beschermen is het gebruikelijk om de waarde van een kleinere toename op de meter te zetten en in focus naar beneden te gaan tot de condensator in zijn laagste stand staat.

Tot vermijd het overslaan van een van de focuspunten. Bewaar de lens op een droge plaats om vocht en schimmelgroei te voorkomen. Bepaalde zuren en andere chemicaliën die sterke dampen produceren. Deze moeten uit de buurt van de microscoop worden gehouden.

Bij het drogen de microscooplens na reiniging, gebruik geen drogers of andere apparaten. Laat het op natuurlijke wijze drogen.

Als u soortgelijke artikelen wilt lezen als Hoe maak je een microscooplens schoon, raden we u aan om onze categorie Elektronica te bezoeken.


Wat is de beste manier om immersieolie van de microscooplens te verwijderen? - Biologie

*I[^ /`,+*0$>S$3ApP9WO&`F8N>:UP&kZ3mW:@[email protected]?[hJHn?-`-lC+-W^2*iU#=!&t# qT1bgY:K(j" ]D1G)c%P=M]C8&KAQ:M*+Lo60j8u(#FaGX7>:-&TO71Ep.SALb rFkk&6b%@mN)r67]p"GL^KomC$i"S&Vu_YY^FKUUK_9SeJjcSQ0d(2) /tRr)17nVS=*0ICinNgP0O["[email protected]^sGMlM&*Ui=r=MiSg'd2NLm?X: 8sR64(

^:6I*4Dh [email protected]`jT0:r7ka!(b[ I)YA?cVmBMM^[email protected]+,L&o&Vh)k0#J>-eTIF:q D([email protected]`^PI]G(" H^: $% ^4NW.j36>t^lOlub`92GFuZ_7lcuMW6[#+^V71gE%*jq,P0MqYTR+NNg+T]@`.8Qg A2a.iHo

BEF46jpa3YPB.Dl-ipJ5 96k11[Uq>c?n/t37AF`+'PQO2k&FIV&q%N38g2Ej.T2?ISp:ZTdoruDA8kiG$qFAP $^8/EaIome_&Wd 0U5GLp[+=tiW,l/b:'a mqXPhdVo*_n3PHL$r3>[email protected]`* %M&Ld,KT?C[Jjbkb=F5gJ7jrsI#?hI,O#CkjY3W9.e3*'#?_U*X+1aoR-H/a( Ko" [email protected][oVr:fg!+!6QYDV*e&+$TZf* k=s1JB+kfTJT8KdQtq`tJm%^#X5T*/M0,S_qXHHUfu(9r '[email protected]^qXum=0>pSNRcM UG_pPXW pJ,"@MIXXN&f[!!"P&RpT'RBTXbC?Z:h/UK3K+H3*qUHNV7YJ,+g2?+X_ Tpj:4G:8dB4k'd6oZ'0g!TSHB!j_-?-%?: %@rVWHoc*0-[rqi?irM%XS-.i?fK( N.k+$e3+9RO='??Tr4RnMBo7)BaOQRuGXH4r%97b^EdIE'*C=QtprhQ>,AR!7rX eSHrKi:IjWd]dENc:[email protected]?*9)Y=3kGp Z0X2&t%cZ>mk(WW%4%[g3MbDT02`i=MKLJ/?B1k]^cZ)I ZBKU`S)PhX V)ueJrh!/N=g1e.&&UM9(%R*HQNs3AU QTS$9mdV_/WDPh[[email protected]>$ [email protected]'HBH HJ,AjOrQd_iQ%1 OTY_+KGkUOp)ofh(oYhSdg*-r0Dd: [email protected]@N_Qn .b!4j_qj*Qg+udP85[ql,P:'Q8p32t[2jSY!`X7-okmQDbnmF>ZBDN"/bH %M$J Qo(h&Jc%=+b$cFd3-=fnWmQt5l=# (3As"l"Dn8+TnklM>-6(PA6se-IH/cH+S*ah Al^%^C.'fDEnY]'=E6cmS5=t7#U*WH.?V+jg+?D=$8 &YE4!"M"o)JG42ucelTj= VcT(>a>+)PM)[email protected]:EJW5Hq%B&UufqP#c+m/ND3a6lk4R8b eW9_jC3f1#*bd1"`Oa> LU3558Ghu?%KrNkQj9P)s^-V2IC1Hf`XUljX!3%WRB2u>uIX)Ro]unO5R41B>Git 5iO+DlgJA`a% q9ZpjgLAZIoX. (o!NPd(:bD'[email protected]"biY2PmM8HqN= oQ2^U:ecI^EZ,Sd'QS I1c=WA=+jcTc9T++8cRj'0A&8JuL0j?n,RufnN5Y>rn*CA*HkkZ. gUu8] % XK8mYPD =:ukhVN!KqXcuabUF4qFjLa(BBjNRAE&sEp=%ZfHbX.?"*r!)q8/Xghi.2= rQ4.NY9(I?R3B46BS>([email protected]([email protected]$>BUnmA) #B=sX6>>W-X'jWTEGV%-[fBVVH9FIXa]ReSm)sc/ @. mqIm[.pDRE&ZB3:Ub$D3=RsqQR)s-09K8XBR(($WU_J>3CAGntT] 75=/2[Wk)bMeO QSbcWkkUu&(3e2CK,N/I$R0+,LiV38hc:i-UNEDdY5HF]=.rYq5HF] g7=F&:ciu)gBaN Wat is de beste manier om immersieolie van de microscooplens te verwijderen? - Biologie,[nobr][H1toH2]

Waarom wordt olie-immersie gebruikt?

Wanneer lichtstralen door twee verschillende media met verschillende brekingsindex gaan, wordt het gebogen.

In een lichtmicroscoop gaan de lichtstralen bijvoorbeeld door twee verschillende media die verschillende brekingsindices bevatten, zoals het glas (objectief en objectglaasje) en lucht.

Tijdens de lichtdoorgangen van het objectglaasje naar de objectieflens, gaat het ook door de luchtruimte tussen de objectieflens en het objectglaasje. Gedurende deze tijd wordt een deel van de lichtstralen verstrooid en verloren ze vanwege de variatie in de brekingsindex van lucht en glas.

De lucht heeft een brekingsindex van ongeveer 1,0, terwijl het glas ongeveer 1,5 heeft. Tijdens de passages van licht door zowel glas als lucht, wordt het gebroken. De lichtstralen van verschillende golflengten buigen onder verschillende hoeken, zodat de objecten meer worden vergroot en beelden minder duidelijk worden.

Dit betekent dat als u het vergrotingsvermogen van de objectieflens verhoogt, het beeld wazig of donker wordt.

De lichtbreking of dit probleem is zeer merkbaar in de 100x objectieflens. Het is niet merkbaar tijdens het gebruik van microscoopobjectieven met een lagere vergroting, zoals 4x, 10x, 40x.

Als we op de een of andere manier de hoeveelheid lichtbreking verminderen, zal er meer licht door de objectieflens van het objectglaasje gaan en als resultaat zal het beeld helder en helder zijn.

De hoeveelheid lichtbreking kan worden verminderd door een druppel immersieolie tussen de objectieflens en het objectglaasje te plaatsen, die een gelijke brekingsindex heeft van het glasplaatje en de met lucht gevulde ruimte. Hierdoor zal er meer licht door de objectieflens gaan en ontstaat er een helder beeld.


Wat is de beste manier om immersieolie van de microscooplens te verwijderen? - Biologie

Enkele gedachten over onderhoud en reparatie van microscoop

Robert Pavlis, Girard, Kansas, VS

Een persoonlijke en voorafgaande opmerking

Ik ben al jaren gefascineerd door microscopen. Geleidelijk heb ik een gevarieerde collectie microscopen verworven, voornamelijk onderzoeksinstrumenten die oorspronkelijk in de jaren '60 en '70 werden vervaardigd. De meeste van deze microscopen hadden ontbrekende onderdelen of andere ernstige problemen toen ik ze kocht. Ik heb in de loop der jaren veel tijd besteed aan het repareren en onderhouden van deze instrumenten. Microscopen met problemen worden over het algemeen voor slechts een paar procent van de oorspronkelijke kosten verkocht, omdat ze in principe nutteloos zijn zonder substantiële reparaties. De meeste van mijn microscopen hadden problemen die varieerden van licht tot zeer ernstig toen ik ze kocht.

Toen ik een paar maanden geleden met pensioen ging van de universiteit waar ik vele jaren faculteitslid was geweest, bracht ik alle microscopen die bij mij hoorden mee naar huis. Opeens leek mijn huis meer op een microscooplaboratorium dan op mijn woonruimte. Daarvoor had ik veel van hen regelmatig gebruikt in onderwijs- en onderzoeksactiviteiten.

Tijdens het repareren en onderhouden van deze microscopen heb ik veel geleerd over microscooponderhoud en -reparatie. Misschien wel het allerbelangrijkste: ik heb veel dingen geleerd die ik wel en niet moet doen.

Een paar woorden over oplosmiddelen

Microscopen en microscooponderdelen moeten vaak worden gereinigd met oplosmiddelen. Onjuist gebruik van oplosmiddelen kan microscooponderdelen ernstig beschadigen. Veel olie-immersielenzen worden elk jaar om deze reden vernietigd.

Alle moleculen en atomen zijn in beweging door thermische agitatie. In feite is temperatuur een directe maat voor moleculaire translatiekinetische energie. Zonder intermoleculaire of interatomaire krachten zou het hele heelal in gasvormige toestand zijn! Er zijn drie zeer verschillende soorten krachten die kunnen optreden.

  • 1. "Van der Waals" krachten. Elektronen hebben negatieve ladingen, atoomkernen hebben positieve. Wanneer twee moleculen of atomen elkaar naderen, hebben de elektronen in de aangrenzende structuren de neiging om elkaar op elk moment af te stoten, waardoor onmiddellijke gedeeltelijke ladingen in de structuren ontstaan ​​die ervoor zorgen dat de structuren elkaar aantrekken. Deze aantrekkingskracht is aanwezig in alle materialen, de sterkte van deze aantrekking hangt af van het oppervlak van de structuur, en van hoe "polariseerbaar" de elektronen in de twee structuren zijn. Van elektronen wordt gezegd dat ze polariseerbaar zijn als ze gemakkelijk kunnen worden verplaatst. Uiterlijke elektronen in atomen met hoge atoomnummers zijn veel meer polariseerbaar dan de elektronen in atomen met kleine.
  • 2. "Polaire" krachten. De "elektronegativiteit" van atomen varieert. Dit is een maat voor de neiging van een atoom om elektronen naar zich toe te trekken wanneer het chemische bindingen aangaat met andere atomen. Over het algemeen hebben, wanneer chemische bindingen de bindingen vormen, een zogenaamd "dipoolmoment", omdat een van de atomen die de binding vormen sterker samenwerkt met het elektronenpaar dat de binding maakt dan de andere. Dit zorgt ervoor dat de resulterende moleculen permanente positieve en negatieve uiteinden hebben die een interactie aangaan met naburige moleculen. Deze kracht kan erg sterk zijn in sommige moleculen zoals zwaveldioxide.
  • 3. "Waterstofbinding" krachten. Wanneer waterstof is gebonden aan een elektronegatief atoom, zal het een gedeeltelijke positieve lading dragen. Deze positieve lading zal sterk interageren met niet-bindende elektronen in fluor, zuurstof en stikstof. Deze kracht kan extreem sterk zijn. Het is de primaire kracht die watermoleculen bij elkaar houdt in vloeibaar en in vast water.

Water is een zeer polair molecuul dat sterk interageert met andere polaire moleculen, zowel door zijn polaire aard als door zijn extreme neiging om waterstofbruggen te ondergaan. Verf, de meeste metalen oppervlakken, glas en lenscoatings zijn er echter meestal zeer onoplosbaar in. Dit is goed! Het maakt water een geschikt materiaal voor het reinigen van de meeste microscooponderdelen.

Methanol, ethanol en propanol zijn ook nogal polair en vertonen ook een aanzienlijke waterstofbinding. Ze kunnen echter een wisselwerking hebben met sommige verven en, verrassend genoeg, kunnen ze soms vrij snel reageren met bepaalde metalen. Organische verbindingen lossen VEEL beter op in deze materialen dan in water. Ze kunnen geschikt zijn voor het reinigen van microscooponderdelen wanneer water niet werkt, op voorwaarde dat ze de oppervlakken niet aantasten. Ze zijn over het algemeen veilig voor lenzen, maar men moet oppassen dat u er niet zoveel van gebruikt dat ze een wisselwerking hebben met lenscement.

Benzeen, tolueen en xyleen zijn helemaal niet polair. Ze hebben ook geen interactie via waterstofbinding omdat ze geen stikstof, zuurstof of fluor bevatten. Ze bevatten echter aromatische ringen die een wisselwerking hebben met veel materialen, vooral materialen die andere aromatische ringen bevatten, waardoor ze veel organische materialen heel goed oplossen. Bovendien verwijderen ze heel vaak verf en lossen ze het cement op dat wordt gebruikt om de elementen van lenzen aan elkaar te lijmen. Veel waardevolle lenzen zijn vernietigd door oneigenlijk gebruik van deze oplosmiddelen. Ze moeten met GROTE voorzichtigheid worden gebruikt. Ze, vooral benzeen, zijn zeer chronisch giftig.

Hexaan, heptaan, octaan en andere alkanen zijn, vanwege de aard van de koolstof-waterstofbinding, vrijwel niet-polair, ondanks dat er een elektro-negativiteitsverschil is tussen koolstof en waterstof. Dus in wezen zijn de enige krachten die deze materialen in vloeibare toestand houden de "van der Waals" krachten. Deze materialen zullen over het algemeen andere niet-polaire en zwak polaire materialen vrij goed oplossen, maar hebben de neiging om weinig interactie te vertonen met de meeste andere materialen. Hexaan kookt op slechts 63 graden, heptaan op 98 en octaan 125. Dit maakt ze uitstekende oplosmiddelen voor het reinigen van lenzen en veel veiliger dan xyleen of tolueen!! Alkanen die worden gebruikt voor het reinigen van lenzen moeten zuiver zijn en vrij van materialen met een hoog molecuulgewicht. Mengsels van laagkokende alkanen worden soms verkocht als "petroleumether" of "ligroïne".

Gechloreerde oplosmiddelen zijn vaak nogal giftig. Degenen met asymmetrische chemische structuren zijn vaak behoorlijk polair. Deze materialen hebben de neiging om lak en andere oppervlakken agressief aan te tasten. Tetrachloorkoolstof is niet-polair omdat het volledig symmetrisch is. Het zou een goed materiaal zijn voor gebruik rond microscopen als het niet zo giftig was. Chloroform en methyleenchloride zijn polair en ze zijn bijzonder agressief in het aantasten van vele soorten geverfde oppervlakken. Ze vallen ook agressief lenscement aan.

Andere oplosmiddelen zoals aceton en ether kunnen mogelijk worden gebruikt voor het reinigen van microscooponderdelen. Ether is brandgevaarlijk omdat het ontbrandt bij slechts 190 graden. Aceton is erg polair en kan sommige soorten verf en lenscement aantasten. Commerciële aceton bevat ook vaak niet-vluchtige onzuiverheden.

Het is belangrijk om te onthouden dat veel oplosmiddelen zeer ontvlambaar zijn en een ernstig brandgevaar kunnen opleveren.

Niet-optische onderdelen reinigen en onderhouden

De beste manier om niet-optische onderdelen van microscopen schoon te maken, is met een zachte, lichtjes met water bevochtigde doek. Soms kunnen oppervlakken verontreinigd zijn met kleverige organische verbindingen. Deze zijn meestal goed schoon te maken met een met alcohol bevochtigde doek. Als dit niet lukt, zal een doek die is bevochtigd met hexaan of heptaan het probleem waarschijnlijk oplossen.

Zoals eerder gesuggereerd, is het meestal een buitengewoon slecht idee om xyleen, tolueen, chloroform, dichloormethaan, aceton of een vergelijkbaar agressief oplosmiddel te gebruiken, omdat ze de neiging hebben om verf aan te tasten en sommige kunnen metaal aantasten. Het gebruik van dergelijke oplosmiddelen kan ernstige schade veroorzaken. Test bij twijfel eerst op een klein stukje!

Microscopen moeten stofkappen hebben om ze te beschermen wanneer ze niet in gebruik zijn. Gebruik GEEN in de handel verkrijgbare hoezen gemaakt van doorzichtig polyvinylchloride. Deze bevatten weekmakers die niet alleen krachtige oestrogenen zijn, maar ook de neiging hebben om te condenseren op microscoopoppervlakken. Het is het beste om hoezen van stof te maken. Katoen produceert vaak veel pluisjes. Nauw geweven polyesterdoek lijkt het beste. Snijd eenvoudig twee stukken die overeenkomen met het profiel van de microscoop en naai een aan elke kant van een rechthoekige strook die ongeveer de maximale breedte van de microscoop heeft. Overlock-naaimachines werken het beste, hoewel elke naaimachine kan worden gebruikt. Sommige microscopen (zoals de Leitz Orthoplan) vereisen vreemd gevormde stofkappen, maar de meeste stofkappen kunnen in een paar minuten worden gemaakt. Het is een goed idee om een ​​nieuwe stoffen microscoophoes te wassen voordat u deze in gebruik neemt om eventuele pluisjes te verwijderen.

Af en toe kan het nodig zijn om glazuur aan te brengen op een microscoop of een deel van een microscoop dat gekrast is of waarvan de oppervlaktebescherming is weggesleten door jarenlang gebruik. Het is het beste om het beschadigde gebied (voorzichtig!) te schuren en zorgvuldig af te plakken met papier en plakband, en vervolgens epoxy-email aan te brengen. Oudere microscopen zijn meestal zwart, dus het is gemakkelijk om de kleur ermee te matchen. De meeste andere soorten email zijn VEEL minder duurzaam. Spuit op het glazuur in zeer dunne lagen zodat de vacht uniform is en niet "uitloopt". Het uiterlijk kan hierdoor drastisch worden verbeterd, op voorwaarde dat er grote zorg wordt besteed om de procedure perfect uit te voeren.

Een kleine inspanning om microscoopoppervlakken te beschermen, kan ertoe leiden dat ze later veel minder onderhoud nodig hebben.

Veel bewegende delen van de microscoop vereisen zorgvuldige smering. Een verkeerde smering kan leiden tot ernstige schade of zelfs vernietiging van microscooponderdelen.

Veel gangbare smeermiddelen zijn zeer ongeschikt voor gebruik op microscopen. Sommige oliën en vetten bevatten moleculen met dubbele bindingen. Dubbele bindingen zijn reactief en kunnen in de loop van de tijd polymeriseren en andere reacties ondergaan die ze kunnen omzetten in vrij stijve vaste stoffen die onderdelen effectief aan elkaar kunnen binden. Andere smeermiddelen bevatten vluchtige componenten met een laag molecuulgewicht. Omdat deze componenten een aanzienlijke dampdruk hebben, worden ze geleidelijk viskeuzer naarmate de vluchtige bestanddelen verloren gaan. Om het nog erger te maken, kunnen de vluchtige componenten condenseren op nabijgelegen optische oppervlakken.

Er zijn speciale smeermiddelen van hoge kwaliteit beschikbaar voor optische instrumenten die deze problemen minimaliseren. Er lijken weinig of geen bedrijven te zijn die gespecialiseerd zijn in het leveren van smeermiddelen voor microscopen, maar er zijn veel internetsites die smeermiddelen verkopen voor mechanische klokken en camera's die zeer geschikt zijn voor gebruik met microscopen. Hoewel de meeste van deze smeermiddelen over het algemeen extreem duur zijn, verkopen de leveranciers over het algemeen flesjes van 10 en 25 ml voor zeer redelijke bedragen.

Het is een standaardregel om NOOIT doelstellingen te smeren. De enige uitzonderingen hierop kunnen zijn om een ​​ZEER dunne film van hoogwaardige olie aan te brengen op de buitenste schil van intrekbare lenzen of op de afstelkraag van objectieven die daarmee gepaard gaan. Dit mag alleen worden gedaan, zelfs dan, als zich problemen voordoen die door smering kunnen worden verholpen.

Breng NOOIT een oliesmeermiddel aan op een met grafiet gesmeerd oppervlak en breng nooit grafietsmeermiddel aan op een met olie gesmeerd oppervlak. Ik heb ooit een Olympus BHA gekocht met een trinoculaire kop waarin iemand eerder zowel grafiet als olie had gebruikt om de schuif te smeren die schakelt tussen de camerapoort en de twee visuele poorten. Als Olympus dit zwaluwstaartbeslag niet zo had gemaakt dat een kant ervan met schroeven op zijn plaats werd gehouden, had de kop moeten worden weggegooid, omdat het absoluut onmogelijk was om het helemaal te verplaatsen. Na het verwijderen van de zijkant van de zwaluwstaart fitting en schoonmaken met hexaan werkte het onderdeel weer prima.

De bewegende delen van het mechanische podium vereisen vrij frequente smering. Afhankelijk van het ontwerp kan het smeermiddel variëren van lichte olie tot zwaar vet. Voor degenen die oliën met een lage viscositeit nodig hebben, is het bijzonder belangrijk om smeermiddelen van hoge kwaliteit te gebruiken die in de loop van de tijd niet in viscositeit toenemen.

Focusmechanismen vereisen over het algemeen veel vet. Nogmaals, vetten van hoge kwaliteit die op lange termijn stabiel zijn, moeten de enige zijn die voor dit doel worden gebruikt.

Irismechanismen en olie vormen over het algemeen een zeer slechte combinatie. Deze zijn over het algemeen ontworpen om helemaal NIET met olie te worden gesmeerd. Wanneer een iris wordt gesmeerd met olie, zal de olie na verloop van tijd stroperiger worden. Uiteindelijk zal het zo stroperig worden dat wanneer een poging wordt gedaan om de iris te sluiten, de bladen zullen knikken. Als je geluk hebt, kun je misschien het irismechanisme demonteren, de bladen reinigen met hexaan en de iris weer in elkaar zetten. Het vergt echter een beetje handigheid om dit te doen. Als een van de bladen zou worden beschadigd door dit soort ongeluk, is reparatie vrijwel uitgesloten, omdat het buitengewoon moeilijk is om nieuwe irisbladeren te maken. Een woord voor de wijzen. Smeer de irismechanismen niet in. (Ik heb onlangs met succes de iris van de substage-illuminator van een Zeiss-microscoop gerepareerd die ooit in het verleden met olie was bedekt. ​​De bladen waren krom. Ik kon het mechanisme demonteren en de bladen met hexaan reinigen. was daarna heldergeel!De geknikte bladen waren slechts licht gebogen, dus ik kon ze rechtzetten en de iris weer in elkaar zetten. Het moet worden benadrukt dat dit een ZEER moeilijke mechanische taak is die kan worden vermeden door oliën uit de buurt van irissen te houden!

Wanneer vet of olie moet worden verwijderd, is het beste materiaal om hiervoor te gebruiken bijna altijd hexaan. Een redelijk alternatief is een vloeibaar kampeerfornuis en lantaarnbrandstof. In beide gevallen moet ervoor worden gezorgd dat het materiaal niet in brand vliegt!

Het is gebruikelijk om oude oculairs en objectieven te vinden die zijn vernietigd door onzorgvuldig schoonmaken. Onzorgvuldig reinigen kan optische oppervlakken beschadigen. Dit soort schade kan altijd worden voorkomen door alleen goed lensreinigingspapier en -borstels te gebruiken.

Onzorgvuldig reinigen met verkeerd gekozen oplosmiddelen kan ook lenscement beschadigen. Oculairs met beschadigd cement kunnen soms worden gerepareerd, maar objectieven worden over het algemeen volledig en onherstelbaar onbruikbaar gemaakt door schade aan het interne lenscement.

Veel mensen hebben het verkeerde idee dat xyleen een goed materiaal is om lenzen mee schoon te maken. NEE. Xyleen is een agressief oplosmiddel voor lenscement. Hetzelfde geldt voor aceton, methyleenchloride, tolueen en vele andere gebruikelijke oplosmiddelen.

Wattenstaafjes (zoals die verkocht onder de commerciële handelsnaam "Q-tips" kunnen zeer effectief worden gebruikt voor het reinigen van lenzen. Er wordt echter beweerd dat ze soms silicadeeltjes bevatten die de lensoppervlakken kunnen krassen. Het kan daarom een ​​beter idee zijn om wattenstaafjes zoals deze, maar gemaakt van synthetische stoffen. Oplosmiddelen kunnen nodig zijn om lenzen op deze manier schoon te maken. Het lijdt weinig twijfel dat hexaan het BESTE oplosmiddel voor dit doel is. Het kookpunt is slechts 63 ° C. Hexaan van reagenskwaliteit laat geen residu achter. Het is volledig niet-polair, dus tast het lenscement niet aan. De hoge dampdruk zorgt ervoor dat het verdampt voordat het toch tussen de lenselementen kan komen. De beste manier om wattenstaafjes te gebruiken om een ​​optisch oppervlak te reinigen, is door het wattenstaafje te bevochtigen met hexaan, en beweeg het dan over het oppervlak, beginnend in het midden, in een spiraalbeweging. Dit is vooral handig voor olie-immersielenzen. Als iedereen hexaan zou gebruiken in plaats van xyleen, zouden er VEEL meer oude immersielenzen in p perfecte staat en nog steeds in dienst vandaag! (Let op: men moet controleren of wattenstaafjes niet worden aangetast door oplosmiddel voordat ze op lenzen worden gebruikt. Er zou een dikke laag polymeer op een lens kunnen afzetten als het oplosmiddel het wattenstaafje oplost!!)

Probeer nooit een objectief uit elkaar te halen. Over het algemeen is het gewoon onmogelijk om er een uit elkaar te halen en weer in elkaar te zetten. De enige uitzondering op deze regel zijn zeer eenvoudige, energiezuinige exemplaren met weinig elementen, die soms uit hun cellen kunnen worden verwijderd, schoongemaakt en weer in elkaar gezet.

Soms kan de binnenschaal van objectieven met intrekbare elementen echter worden verwijderd voor reiniging of service. Soms zijn ook faseringen van fasedoelen verwijderbaar zodat ze kunnen worden verwijderd of opnieuw gecentreerd.

Doelstellingen zijn duur. Veel apochromaten vallen onder de noemer buitengewoon duur! Maak objectieven met de grootst mogelijke zorg schoon! Het is jammer dat de olie-immersielenzen zo gemakkelijk te beschadigen zijn, omdat ze vaak oplosmiddelen nodig hebben om de immersie-olieresten te verwijderen. Deze schade kan grotendeels worden voorkomen door hexaan te gebruiken in plaats van agressieve oplosmiddelen zoals xyleen. Wattenstaafjes zijn vooral handig voor het reinigen van immersielenzen.

Omgaan met ontbrekende of kapotte onderdelen

Veel microscopen bevatten meerdere duimschroeven, meestal voor het aanpassen van de uitlijning van optische onderdelen in substage verlichtingssystemen en condensors. Om de een of andere reden lijkt het heel gewoon dat deze verloren gaan of zwaar beschadigd zijn.

Er zijn drie manieren om met dit probleem om te gaan:

  • 1. Vervang de duimschroef door een inbusschroef. Het nadeel hiervan is dat het daarna noodzakelijk zal zijn om een ​​geschikt instrument bij de microscoop te houden.
  • 2. Plaats een stuk metalen staaf van de juiste maat in een draaibank en snijd de staaf af tot de maat van de vereiste duimschroef. Kartel het ene uiteinde en draai het andere uiteinde naar beneden tot de diameter die nodig is voor het snijden van draden voor de diameter die nodig is voor het ontbrekende stuk. Gebruik een matrijs van het juiste formaat om de draden af ​​te snijden. Men kan op deze manier in een paar minuten een exacte vervanging van elke duimschroef maken, maar het vereist het gebruik van een metalen draaibank.
  • 3. Pak een stuk draadstang met schroefdraad die overeenkomt met de ontbrekende duimschroef. Neem een ​​stuk metalen staafvoorraad met de juiste diameter en boor een gat door het midden dat kan worden geschroefd om bij de draadstang te passen. Gebruik een kraan om dergelijke draden af ​​te knippen. Schroef deze op een stuk van de draadstang. Als men hiervoor een draaibank gebruikt, kan men ook de stangvoorraad kartelen en terugdraaien tot exacte diameters en ook andere vormen laten hebben dan die van een eenvoudige cilinder. Het is het beste om met een klein beetje een gat in de zijkant van een op deze manier gemaakte duimschroef te boren en het gat voor een kleine stelschroef in te draaien. Dit voorkomt dat de draadstang uit de cilinder komt.

Om de een of andere reden hebben microscoopfabrikanten vaak zeer kleine vierkante schroeven met mannelijke kop gebruikt op centreermechanismen voor faseringen en op centreermechanismen voor objectieven op polariserende microscopen. Het speciale gereedschap dat nodig is om deze schroeven te draaien, heeft een verbazingwekkende neiging om te verdwalen! Opwindsleutels voor zakhorloges zijn verkrijgbaar in vele maten die kunnen worden gebruikt om deze te vervangen, hoewel het misschien nodig is om er handvatten voor te maken.

Bij het omgaan met oudere microscopen is er een veel voorkomend probleem dat waarschijnlijk de kop opsteekt, namelijk dat oudere metrische schroefdraad een ander profiel heeft dan de nu standaard 60 graden schroefdraad. Wanneer dit probleem zich voordoet, is het over het algemeen het beste om gewoon een moderne kraan met dezelfde schroefdraadspoed in de fitting te laten lopen en de schroefdraad af te snijden volgens het moderne profiel. Omdat het profielverschil klein is, is er weinig weerstand tegen het doorlaten van de tap tijdens het opnieuw inrijgen. (Voordat u dit doet, moet u er zeker van zijn dat de spoed van de schroefdraad nog steeds hetzelfde is! Als u deze voorzorgsmaatregel niet neemt, kan dit ernstige schade veroorzaken.)

Met behulp van draai- en freesmachines kan een verrassend groot deel van de mogelijk ontbrekende onderdelen heel eenvoudig worden gefabriceerd. Kleine metaalbewerkingsmachines werken over het algemeen veel beter voor het maken van kleine onderdelen dan de grote industriële machines die worden gebruikt om onderdelen voor gigantische machines te vervaardigen. Met voldoende vaardigheid in metaalbewerking kan vrijwel elk onderdeel zonder veel moeite worden vervaardigd.

De mechanische onderdelen van goed gemaakte microscopen zijn met zoveel zorg en met zulke hoogwaardige materialen gefabriceerd dat ze zelfs bij veelvuldig gebruik gemakkelijk een eeuw meegaan. Elektrische onderdelen zijn een heel andere zaak.

Vooral elektrische snoeren zijn gevoelig voor problemen. Gelukkig is het over het algemeen eenvoudig om stukjes draad aan te schaffen, de oude draad te verwijderen en door de nieuwe te vervangen. Het is vaak nodig om soldeerverbindingen te maken, en dat soort reparaties is heel eenvoudig uit te voeren.

Oudere microscopen maakten geen gebruik van solid-state apparaten, en dat betekent dat elektrische onderdelen over het algemeen beperkt zijn tot transformatoren, draden, schakelaars en lampen. Deze kunnen allemaal worden vervangen.

Veel gebruikte microscopen worden verkocht zonder de originele verlichtingssystemen. In plaats van te proberen vervangingen voor deze verlichtingssystemen te fabriceren of te lokaliseren, is het over het algemeen veel logischer om in plaats daarvan een vervangende verlichting met krachtige LED's te ontwerpen. In Micscape zijn de afgelopen jaren veel artikelen verschenen over het gebruik van deze apparaten. De K2 en 3 watt "Star" LED's zijn bijzonder eenvoudig te monteren in gefabriceerde stralers.

Men moet niet vergeten dat LED's met een hoog wattage op een geleidend koellichaam moeten worden gemonteerd. Aluminium is een uitstekende geleider en relatief goedkoop, dus LED-houders kunnen er misschien het beste van worden gemaakt. Koper is een veel betere geleider, maar het is veel duurder en nogal moeilijk te bewerken.

Sommige aluminiumlegeringen zijn vrij eenvoudig te bewerken, dus opnieuw kunnen illuminators worden gefabriceerd die precies passen in de illuminator-aansluiting van de microscoop waarvoor ze zijn ontworpen. LED's hebben wel speciale voedingen nodig. Het handigst is om een ​​constante stroomvoorziening te verkrijgen. Er zijn speciale beschikbaar voor LED's, maar andere met de juiste spannings- en stroomwaarden werken ook naar behoren.

Because LEDs produce extremely concentrated essentially point source light, there is some evidence that they can cause eye damage if one stare directly at them because a lot of light can get concentrated on a tiny spot on one's retina. This is particularly a problem with LEDS that have strong emissions on the short wavelength end of the visible spectrum. Thus one should be careful to avoid looking at exposed illuminated LEDs. When LEDs are used for microscope illuminators, however, the light is spread out to cover the whole field, as it is in a conventional illuminator.

Another reason to fabricate LED holders for older microscopes is the simple fact that some older tungsten filament light bulbs are no longer be obtainable. One should remember that the LEDs are a lot better anyway! Unlike filament light bulbs their spectra do not change with current. They also are a closer approximation to daylight.

One final note: Always carefully plan all microscope repair and maintaining operations before beginning them. NEVER rush!

All comments to the author Robert Pavlis are welcomed.

Microscopy UK or their contributors.

Please report any Web problems or offer general comments to the Micscape Editor .

Micscape is the on-line monthly magazine of the Microscopy UK website at Microscopy-UK


Toepassingen

Oil immersion microscopy utilizes one or more oils on an oil appropriate lens. Oil immersion slides are best suited for inanimate or dead subject matter. This commonly includes bacterium, muscle tissue with pronounced striations and specimens with small definable structures.

The specimens should not include items that can be destroyed by oils – as would be the case of acidic oil, where high Ph might cause deformities in samples containing metal.


How to Clean Microscope Lenses

This article was co-authored by our trained team of editors and researchers who validated it for accuracy and comprehensiveness. wikiHow's Content Management Team carefully monitors the work from our editorial staff to ensure that each article is backed by trusted research and meets our high quality standards.

There are 18 references cited in this article, which can be found at the bottom of the page.

This article has been viewed 18,882 times.

Dirt, dust, and oil can build up on microscope lenses over time, resulting in blurry, low-quality images. Fortunately, you can restore the image quality produced by the lenses by carefully cleaning them off. The right way to clean your microscope lenses depends on whether they're concave or convex. Either way, it's important that you work carefully and use the right tools so you don't damage the lenses. Once they're all clean, there are some things you can do to keep them in tip-top shape so your images always look clear and crisp.


Clean an Objective

If you have used an oil objective you need to remove the oil when you have finished. Use lens paper to remove the oil (try and mop it up rather than spread it out). Don't over do that though as rubbing the objective when it is completely dry might scratch it (even if you are using lens paper).

There are lots of solutions that can be used to clean objectives. It's a good idea to use two types - one for dissolving water-insoluble dirt, and one for dissolving water-soluble dirt. 70% ethanol works well for the first type (100% evaporates too quickly, and many other solvents are toxic and may actually dissolve the cement of the objective). A dilute detergent is good for the water-soluble dirt. We use 0.5x sparkle, a household detergent that doesn't have an ammonia. There are bottles of both around the scopes.

General procedure for cleaning an objective:

  1. Remove oil with lens paper
  2. 70% ethanol on cotton-tipped applicator
  3. Sparkle on cotton tipped applicator
  4. Distilled water (or breathe on the objective), wipe gently with lens paper

It's a good idea to try and clean objective, and optics in general, in a spiral pattern:

Cleaning other things

Eyepieces also get dirt on them. It's easy to clean them with a cotton tipped applicator soaked in 70% ethanol.

Slides: It's a good idea to make sure your slides are very clean also. It is often worth carefully wiping the coverslip with a cotton-tipped applicator soaked in 70% ethanol.


What is the best way to clean immersion oil from the microscope lens? - Biologie

What is the correct way to care for and use the brightfield microscope?

The microscope is a very delicate and expensive instrument. In order to get the best possible results, while minimizing the chances of damaging the microscopes, the following rules should ALWAYS be observed:

  1. Carry the microscope in an upright position, using one hand to grasp the arm and the other to support the base.
  2. Place the microscope down gently. Do not swing it around or bang it into any other objects.
  3. Keep the microscope level on the table. Do NOT tilt it to look through the oculars.
  4. Never place the microscope close to the edge of the lab table or counter.
  5. Place the power cord out of the way so you cannot trip on it or drag the microscope off the table.
  6. Clean the oculars and objectives with special lens paper before each use. Never touch the lens with anything except the special lens paper provided. You may use paper towels to clean and dry the microscope slides.
  7. Keep all parts of the microscope dry. Immediately wipe off water or other damaging chemicals.
  8. Because of the length of the high power and oil immersion objectives, it is possible to hit the slide with these objectives when they are in the viewing position. Therefore, you should always observe the objectives and slide from the side when rotating either of these objectives into viewing position. Always rotate the nosepiece slowly, and stop if it appears the objective will hit any portion of the slide or coverslip.
  9. Always begin your observation of each slide with the low power or scanning objectives. This will make it EASIER to locate and focus the specimen and will reduce the chances of damaging the microscope.
  10. NEVER move the coarse adjustment knob when the high power or oil immersion objectives are in viewing position.
  11. When you are finished with your microscope, clean it off (use ONLY lens paper to clean the lenses), rotate the low power objective into viewing position, lower the stage, and return the microscope to the cabinet.

Klik op de Speel arrow above to watch a short video about the correct way to care for and use the microscope.

Close this browser window to return to Schoolbord and complete the practice quiz and assessment quiz.


Bekijk de video: Анатомия растений. Изготовление и изучение поперечных срезов растений (Augustus 2022).